超顺磁性磷酸钙复合支架的制备及性能研究
曾晓波, 胡灏, 解丽芹, 蓝芳, 吴尧, 顾忠伟
四川大学 国家生物医学材料工程技术研究中心, 成都 610064
吴 尧, 副教授. E-mail:Yaowu_amanda@126.com

曾晓波(1986-), 男, 硕士研究生. E-mail:zengxiaobo1986@163.com

摘要

采用共混-真空烧结方法制备了一系列超顺磁性磷酸钙复合支架, 通过SEM、EDS、XRD和VSM等手段对所制备的材料性能进行表征, 并考察了其在水中的稳定性以及Ros17/2.8细胞在材料表面的黏附生长情况。结果表明: 该方法所制备的超顺磁性复合支架具有多级连通孔结构, 磁性纳米颗粒在基体中分布均匀, 结合牢固且复合量精确可控, 在水中具有良好的稳定性。真空烧结避免了磁性纳米颗粒在烧结过程中发生氧化和相变, 使复合支架继续保持超顺磁性并具有良好的磁性能, 且该磁性支架有利于细胞的黏附和生长, 具有较好的生物相容性, 在组织工程中有潜在的应用前景。

关键词: 真空烧结; 超顺磁性四氧化三铁; 磷酸钙; 组织工程支架; 生物相容性
中图分类号:R318   文献标志码:A    文章编号:1000-324X(2013)01-0079-06
Preparation and Properties of Supermagnetic Calcium Phosphate Composite Scaffold
ZENG Xiao-Bo, HU Hao, XIE Li-Qin, LAN Fang, WU Yao, GU Zhong-Wei
National Engineering Research Center for Biomaterials, Sichuan University, Chengdu 610064, China
Abstract

Supermagnetic calcium phosphate composite scaffold was fabricated by merging the superparamagnetic iron oxide (SPIO) into the calcium phosphate scaffold, and then sintered in vacuum. Properties of the obtained magnetic scaffold were investigated by SEM, EDS, XRD and VSM. The stability of magnetic scaffold in water was assessed and Ros17/2.8 cells were cultured on the samples to evaluate the cell adhesion on the scaffold. The results demonstrated that the magnetic scaffold had a porous structure. The magnetic nanoparticles were uniformly distributed and firmly merged into the matrix. The content of magnetic nanoparticles could be accurately tuned, and the magnetic scaffold is stable in water. The composite scaffold maintained excellent magnetic properties, as the vacuum sintering procedure avoided the oxidation and phase transition of the magnetic nanoparticles. It is proposed that the magnetic materials might be a kind of potential bone tissue engineering scaffold in the future.

Keyword: vacuum sintering; superparamagnetic iron oxide; calcium phosphate; tissue engineering scaffold; biocompatibility

磁疗一直被视为治疗骨质疏松、骨不连等骨相关疾病的有效手段之一。大量的文献表明: 外加磁场能够促进成骨细胞的增殖和分化, 从而促进新骨形成[ 1, 2, 3, 4]。此外, 外加磁场还具有促进植入体与骨的整合、提高骨密度和钙含量, 促进骨折愈合等作 用[ 5, 6, 7, 8]。但传统的磁疗通常需要比较复杂的设备, 不方便使用和携带, 从而极大地限制了其应用。

由于出色的生物相容性和超顺磁性, 超顺磁性四氧化三铁superparamagnetic iron oxide(SPIO)已被广泛应用于生物医学领域[ 9, 10, 11], 但在骨组织再生方面的应用还比较少。为了结合磁疗的治疗效果, 开发出新的骨组织工程支架, 近来已有将磁性纳米颗粒复合到骨修复材料中以制备磁性骨组织工程支架的报道[ 12, 13, 14, 15]。由于良好的生物相容性和骨诱导性, 磷酸钙陶瓷已被广泛应用于临床。基于此, 本课题组设计了一种新的骨修复材料: 超顺磁性磷酸钙陶瓷复合支架[ 16]。通过将SPIO复合到磷酸钙多孔陶瓷中, 使支架材料内具有极小的微区磁场, 从而将磁场促进骨生长的功能引入到植入材料中; 同时, 该磁性支架还能响应外加磁场, 并与之产生协同作用, 从而实现磁响应增强型的磁疗作用。体内和体外实验结果均显示: 该磁性支架能显著地促进成骨细胞的增殖、分化和新骨的形成。

在该磁性支架材料的制备过程中, SPIO与磷酸钙多孔陶瓷的复合是通过简单的浸泡吸附作用实现的。目前, 国内外研究者在制备磁性骨组织工程支架时, 主要采用静电纺丝技术[ 12, 13]、纤维沉积技 术[ 14]或吸附方法[ 15, 16]。前两种技术主要用于有机材料, 对于陶瓷基体材料不太适用。制备陶瓷基体材料涉及到高温烧结过程, 会导致SPIO氧化, 因此通常采取先烧结成瓷再通过吸附作用复合的方法。然而, 吸附过程是一个由吸附和解吸附构成的动态平衡过程, 且仅发生在材料的表面与界面, 受材料表界面特性、吸附质浓度、吸附时间、环境温度等诸多因素的影响[ 17]。这使得SPIO在陶瓷基体中的分布不均匀, 纳米颗粒与基体结合不牢固, 且SPIO的复合量有限, 从而将极大地影响其应用。

本研究提出了一种共混-真空烧结方法: 先按一定比例将SPIO与羟基磷灰石粉体充分均匀混合, 再以硬脂酸为造孔剂, 并经过真空烧结制备出一系列磁性磷酸钙复合支架材料。对其理化性能进行了表征并考察了成骨细胞(Ros17/2.8)在其表面的黏附和生长情况。

1 实验
1.1 试剂

三乙酰丙酮铁、十六烷基二醇、油酸、油胺、苄醚、氯化铁、氯化亚铁、三甘醇、聚乙烯醇(PVA)(以上药品均为分析纯, 购自Sigma-Aldrich), 硬脂酸、氨水(分析纯, 购自成都科龙化工), 羟基磷灰石(HA)气流粉(四川大学生物材料中心提供)。

1.2 Fe3O4磁性纳米颗粒的制备

采用高温热分解法[ 18]制备疏水性的Fe3O4磁性纳米颗粒: 2 mmol三乙酰丙酮铁、10 mmol十六烷基二醇、6 mmol油酸、6 mmol油胺与20 mL苄醚在氮气保护下搅拌加热至200 ℃保温2 h, 继续加热回流1 h, 冷却至室温后, 将所得的黑色沉淀经分离、洗涤、干燥后即得到表面被油酸包裹的疏水性磁性纳米颗粒, 记为SPIO-h。

采用共沉淀法[ 19]制备亲水性的Fe3O4磁性纳米颗粒: 5 mmol FeCl2、9 mmol FeCl3溶于60 mL超纯水中, 氮气保护下搅拌加热至50℃, 缓慢加入15 mL氨水, 继续搅拌加热至80℃反应1 h, 冷却至室温后, 将所得的褐色沉淀经分离、洗涤、干燥后即得到表面带羟基的亲水性磁性纳米颗粒, 记为SPIO-c。

1.3 粉体的均匀混合

将羟基磷灰石(HA)气流粉在800℃下预烧8 h, 按照每100 g HA粉体加入70 mL浓度为5%的聚乙烯醇水溶液和1 g三甘醇的比例加入粘结剂, 同时按照所需复合Fe3O4的量加入相应的SPIO。经充分研磨混匀后, 真空干燥24 h, 取出继续研磨并过筛(~150 μm)后得到均匀混合的粉体。

1.4 成型与烧结

将1.3节制得的混合粉体与硬脂酸造孔剂按1: 1的质量比进行混合, 搅拌均匀后压制成型, 压力为4 MPa, 保压时间为20 s。在真空烧结炉中, 将压制成型的样品经低温煅烧(300℃, 0.5 h)除去粘接剂, 并使致孔剂燃烧挥发从而在基体中残留大孔, 再升温至1100℃煅烧2 h, 随炉冷却后得到多孔的复合陶瓷, 记为MHA。未复合SPIO的纯羟基磷灰陶瓷记为HA。将HA浸泡在SPIO胶体溶液中通过吸附法制备出另一种磁性复合陶瓷[ 16], 记为MHA0。HA和MHA0均作为对照样品。通过改变Fe3O4磁性纳米颗粒的种类和复合量制备了一系列磁性磷酸钙复合生物陶瓷(见表1)。

表1 复合支架中SPIO的掺杂类型及比例 Table1 Types of magnetic scaffolds of calcium phosphate with SPIO
1.5 样品表征

采用HitachiSU-70 型热场发射扫描电子显微镜(SEM)观察样品的形貌, 并用仪器自带的能谱仪(EDS)分析样品表面的化学组成、DX-1000型X射线衍射仪分析样品的物相组成、振动样品磁强计(VSM)(BHV-525, 日本理研电子公司)测试样品的饱和磁化强度、排水法测定材料的孔隙率。

材料在水中的稳定性评价: 将材料浸泡在37℃的水中, 用原子吸收光谱仪(AAS, Perkin Elmer AAnalyst800)检测各时间点的浸提液中的Fe元素含量。

1.6 细胞在材料表面黏附和生长情况

将Ros17/2.8细胞按1×105cells/mL的密度接种到材料表面, 在37℃、5 vol% CO2条件下共培养24 h后, 经戊二醛固定, 酒精梯度脱水和临界点干燥后进行SEM检测。

2 结果与讨论

分别采用高温热分解法和共沉淀法成功制备了具有超顺磁性的疏水性和亲水性的Fe3O4纳米颗粒。经测试, SPIO-h粒径约8 nm, 表面被油酸包裹, 油酸所占的质量分数约为40%; SPIO-c粒径约为10 nm, 表面含亲水羟基, 无有机分子包裹, 两种磁纳米颗粒的饱和磁化强度均为~50 Am2/kg。所得结果与文献报道相符[ 18, 19, 20, 21, 22]

2.1 形貌与结构分析

为了研究掺入SPIO对复合支架形貌和结构的影响, 分别选取了SPIO掺入量最高的两种材料MHA1、MHA4以及纯HA进行SEM分析。由图1可知, MHA1、MHA4均与HA具有相似的形貌和多孔结构。其大孔相互连通, 孔径约300~700 μm, 大孔孔径可通过改变致孔剂的粒径大小进行调控。同时, 大孔孔壁上还有大量1~2 μm的微孔。这种大孔套小孔的多级连通孔结构, 非常有利于组织和血管的长入及营养物质的传输[ 23]

图1 MHA1(a,d,g)、MHA4(b,e,h)及HA(c,f,i)等三种陶瓷的SEM照片Fig. 1 SEM images of MHA1 (a, d, g), MHA4 (b, e, h) and HA (c, f, i)

EDS能谱图证实了复合材料中存在Fe、Ca和P等元素, 且其元素组成比例与理论值都十分接近。如MHA4 的EDS能谱图中(图2)所示, Fe的质量百分比为6.6%, Ca/P比为1.676, 两者均十分接近理论值(分别为6.58%和1.67)。由表2可知, 吸附法制备的MHA0的Fe含量明显高于理论值, 说明SPIO在基体中分布不均, 大量富集在支架表面, 而共混烧结法制备的各种类型的磁性支架的Fe含量和Ca/P比均与相应的理论值十分接近, 未出现SPIO在局部富集的情况, 说明SPIO被成功地复合到HA中, 且分布均匀, Fe含量与掺入量一致。

图2 MHA4的扫描电镜照片(a)和EDS能谱图(b)Fig. 2 SEM image (a) and EDS pattern (b) of MHA4

表2 复合支架中Fe元素的质量分数与钙/磷比 Table 2 Fe content and Ca/P ratio of magnetic scaffolds

孔隙率测定结果显示各种类型的MHA与HA的孔隙率十分接近, 均为67%左右。且可以通过改变粉体与造孔剂的混合比例进行调控。

为了研究SPIO的掺入对HA晶体结构的影响, 分别选取了SPIO掺入量最高的两种材料MHA1、MHA4以及烧结后的纯羟基磷灰石(HA)和未经烧结的HA粉体(HA-p)进行XRD衍射分析(如图3所示)结果显示, MHA1、MHA4和HA与HA-p相比峰形变得更尖锐, 说明烧结使前三种样品的结晶度提高。四种样品均具有相似的晶体结构, 出峰位置都与标准HA十分吻合, 说明SPIO的加入未导致第二相的形成, 也未改变HA的晶体结构。由于纳米级的Fe3O4的衍射峰强度太弱, 在图中无法看到Fe3O4纳米晶体的特征峰。

图3 MHA1、MHA4、HA及HA-p四种样品的XRD图谱Fig. 3 XRD patterns of MHA1, MHA4, HA and HA-p (HA powder before sintered)

2.2 磁性能

VSM测试结果显示, 本研究中各种类型的磁性复合支架具有相似的磁性能, 图4仅给出四种样品的磁滞回线, 其中a和c分别是MHA1在真空烧结后和烧结前的磁滞回线, 曲线均过原点且几乎没有剩磁和矫顽力, 显示出典型的超顺磁特性。图4(b)是MHA1在空气中烧结后的磁滞回线, 其线型与纯HA的线型(图4(d))基本一致, 磁滞回线不过原点, 存在剩磁和矫顽力, 不具有超顺磁特性。实验结果显示, 与常规烧结相比, 真空烧结过程能够有效避免SPIO被空气氧化而发生相变, 从而保留其超顺磁特性, 使复合材料具有更好的磁响应性。

图4 三种方法(a:真空烧结、b:空气中烧结、c:未烧结)制备的MHA1和经真空烧结的HA(d)的磁滞回线Fig. 4 Magnetization curves of MHA1 after sintered in vacuum (a), MHA1 after sintered in air (b), MHA1 before sintered (c) and HA after sintered in vacuum (d)

2.3 稳定性评价

为测试复合陶瓷在水中的稳定性, 将SPIO含量最高的两种材料(MHA1和MHA4)以及对照材料MHA0在水中分别浸泡7 d, 在各时间点(4 h、8 h、12 h、1 d、3 d、5 d、7 d)用AAS检测浸提液中的Fe元素含量。结果显示: 吸附法制备的材料在浸泡的初期(1 d)迅速释放出少量SPIO(约占复合总量的2%), 然后趋于稳定; 而共混-烧结法制备的两种材料在每个时间点的浸提液中均未检出Fe元素, 说明SPIO被牢固复合在HA基体中, 几乎未游离到浸泡液中。吸附法制备的材料由于大部份SPIO都吸附在材料的表面, 解吸附作用会使少量SPIO更容易地从材料中游离出来; 而共混-烧结法制备的复合陶瓷, SPIO纳米颗粒在烧结之前的机械混合过程中已被充分复合到HA粉体中, 再经真空烧结过程, SPIO则被牢固地包裹在HA的晶相组织中, 很难游离出来[ 24], 因此该复合陶瓷具有更好的稳定性。

2.4 细胞在材料表面黏附和生长情况

SEM照片(图5) 显示, 在SPIO复合比例相同(质量比均为5:100)的MHA1与MHA5表面, 以及纯HA表面, Ros17/2.8细胞都能够很好地黏附和生长, 与HA上的细胞相比, 在相同的培养时间内(24 h)两种磁性支架上的细胞跟材料黏附得更紧密, 铺展得更好, 数量更多, 状态更好。说明经本方法所制备出的磁性陶瓷材料具有良好的生物相容性, 且比纯HA陶瓷更有利于细胞的黏附和生长。

图5 Ros17/2.8细胞在MHA1(a, d)、MHA5(b, e)和HA(c, f)材料表面粘附生长的SEM照片Fig. 5 SEM micrographs of Ros17/2.8 cells grown on MHA1 (a, d), MHA5 (b, e) and HA (c, f)

细胞在MHA1和MHA5上的黏附生长情况没有明显差异, 说明掺入的SPIO表面的亲疏水性对细胞行为无显著影响, 这可能是因为通过共混-烧结法制得的材料中, SPIO被包裹在HA的晶相组织当中, 并不能直接与细胞接触, 因此SPIO表面的亲疏水性对复合支架的生物相容性无明显影响。

3 结论

1)通过共混-真空烧结方法成功地将SPIO复合到HA支架中, 制备出孔隙率高、贯通性好、性能稳定的超顺磁性多孔复合陶瓷支架。且其中SPIO分布均匀, 结合牢固, 复合量精确可控。

2)Ros17/2.8细胞能在超顺磁性多孔复合陶瓷支架表面很好地粘附和生长, SPIO的亲疏水性对Ros17/2.8细胞在复合支架表面粘附无明显影响。

参考文献
[1] Bassett C A L, Schink-Ascani M, Lewis S M. Effects of pulsed electromagnetic fields on steinberg ratings of femoral head osteonecrosis. Clin. Orthop. Relat. Res. , 1989, 185(246): 172-185. [本文引用:1] [JCR: 2.787]
[2] Santini M T, Rainaldi G, Ferrante A, et al. Effects of a 50 Hz sinusoidal magnetic field on cell adhesion molecule expression in two human osteosarcoma cell lines (mg-63 and saos-2). Bioelectromagnetics, 2003, 24(5): 327-338. [本文引用:1] [JCR: 2.021]
[3] McLeod K J, Collazo L. Suppression of a differentiation response in MC-3T3-E1 osteoblast-like cells by sustained, low-level, 30 Hz magnetic-field exposure. Radiation Research, 2000, 153(5): 706-714. [本文引用:1] [JCR: 2.698]
[4] Jansen J, van der Jagt O, Punt B, et al. Stimulation of osteogenic differentiation in human osteoprogenitor cells by pulsed electromagnetic fields: an in vitro study. BMC Musculoskeletal Disorders, 2010, 23(11): 188-1-11. [本文引用:1] [JCR: 1.875]
[5] Fini M, Cadossi R, Cane V, et al. The effect of pulsed electromagnetic fields on the osteointegration of hydroxyapatite implants in cancellous bone: a morphologic and microstructural in vivo study. J. Orthop. Res. , 2002, 20(4): 756-763. [本文引用:1] [JCR: 1.013]
[6] Zhang X Y, Xue Y, Zhang Y. Effects of 0. 4 T rotating magnetic field exposure on density, strength, calcium and metabolism of rat thigh bones. Bioelectromagnetics, 2006, 27(1): 1-9. [本文引用:1] [JCR: 2.021]
[7] Chang K, Chang W H. Pulsed electromagnetic fields prevent osteoporosis in an ovariectomized female rat model: a prostagland in E2-associated process. Bioelectromagnetics, 2003, 24(3): 189-198. [本文引用:1] [JCR: 2.021]
[8] Taylor K F, Inoue N, Rafiee B, et al. Effect of pulsed electromagnetic fields on maturation of regenerate bone in a rabbit limb lengthening model. J. Orthop. Res. , 2006, 24(1): 2-10. [本文引用:1] [JCR: 1.013]
[9] Wang L, Yang Z, Gao J, et al. A biocompatible method of decorporation:   bisphosphonate-modified magnetite nanoparticles to remove uranyl ions from blood. J. Am. Chem. Soc. , 2006, 128(41): 13358-13359. [本文引用:1] [JCR: 10.677]
[10] Kim J, Lee J E, Lee J, et al. Magnetic fluorescent delivery vehicle using uniform mesoporous silica spheres embedded with monodisperse magnetic and semiconductor nanocrystals. J. Am. Chem. Soc. , 2005, 128(3): 688-689. [本文引用:1] [JCR: 10.677]
[11] Jun Y W, Huh Y M, Choi J S, et al. Nanoscale size effect of magnetic nanocrystals and their utilization for cancer diagnosis via magnetic resonance imaging. J. Am. Chem. Soc. , 2005, 127(16): 5732-5733. [本文引用:1] [JCR: 10.677]
[12] Wei Y, Zhang X H, Song Y, et al. Magnetic biodegradable Fe3O4/ CS/PVA nanofibrous membranes for bone regeneration. Biomedical Materials, 2011, 6(5): 055008. [本文引用:2] [JCR: 2.158]
[13] Meng J, Zhang Y, Qi X, et al. Paramagnetic nanofibrous composite films enhance the osteogenic responses of pre-osteoblast cells. Nanoscale2010, 2(12): 2565-2569. [本文引用:2] [JCR: 6.233]
[14] Banobre-Lopez M, Pineiro-Redondo Y, De-Santis R, et al. Poly(caprolactone) based magnetic scaffolds for bone tissue engineering. J. Appl. Phys. , 2011, 109(7): 07B313-1-3. [本文引用:2] [JCR: 0.71]
[15] Bock N, Riminucci A, Dionigi C, et al. A novel route in bone tissue engineering: magnetic biomimetic scaffolds. Acta Biomaterialia, 2010, 6(3): 786-796. [本文引用:2] [JCR: 5.093]
[16] Wu Y, Jiang W, Wen X T, et al. A novel calcium phosphate ceramic-magnetic nanoparticle composite as a potential bone substitute. Biomedical Materials, 2010, 5(1): 015001. [本文引用:3] [JCR: 2.158]
[17] Morrison S Roy. 赵壁英, 刘英俊译. 表面化学物理. 北京: 北京大学出版社, 1984: 238-242. [本文引用:1]
[18] Sun S H, Zeng H. Size-controlled synthesis of magnetite nanoparticles. J. Am. Chem. Soc. , 2002, 124(28): 8204-8205. [本文引用:2] [JCR: 10.677]
[19] Kang Y S, Risbud S, Rabolt J F, et al. Synthesis and characterization of nanometer-size Fe3O4 and γ-Fe2O3 particles. Chemistry of Materials, 1996, 8(9): 2209-2211. [本文引用:2] [JCR: 8.238]
[20] Lan F, Liu K X, Jiang W, et al. Facile synthesis of monodisperse superparamagnetic Fe3O4/PMMA composite nanospheres with highmagnetization. Nanotechnology, 2011, 22(22): 225604-1-7. [本文引用:1] [JCR: 3.842]
[21] Lan F, Hu H, Jiang W, et al. Synthesis of superparamagnetic Fe3O4/PMMA/SiO2 nanorattles with periodic mesoporous shell for lysozyme adsorption. Nanoscale, 2012, 4(7): 2264-2267. [本文引用:1] [JCR: 6.233]
[22] Jiang W, Wu Y, He B, et al. Effect of sodium oleate as a buffer on the synthesis of superparamagnetic magnetite colloids. J. Colloid Interface Sci. , 2010, 347(1): 1-7. [本文引用:1] [JCR: 3.172]
[23] Hing K A. Bioceramic bone graft substitutes: influence of porosity and chemistry. International Journal of Applied Ceramic Technology, 2005, 2(3): 184-199. [本文引用:1] [JCR: 1.153]
[24] 崔国文. 缺陷、扩散与烧结. 北京: 清华大学出版社: 1990: 143-175. [本文引用:1]